Tris試劑桶裝，在病毒保存液中，加入Tris首先可以維持采樣樣本的pH值，起到生物緩沖劑的效果，病毒及其核酸對環(huán)境pH是比較敏感的，核酸（DNA、RNA）在酸性溶液中易水解，在中性或弱堿性溶液中較穩(wěn)定。而Tris三羥，PH緩沖范圍：7.0-9.0，能夠維持待提取樣品裂解后釋放的核酸的穩(wěn)定性，以避免核酸的降解，提高核酸的濃度和純度，有利于提高核酸的質(zhì)量，保證后續(xù)核酸檢測分析等操作的準確性。

Tris-HCl緩沖液的缺點：1、緩沖液的pH值受溶液濃度影響較大，緩沖液稀釋十倍，pH值的變化大于0.1；2、溫度效應(yīng)大，溫度變化對緩沖液pH值的影響很大，即：△pKa／℃＝－0.031 ，例如：4℃時緩沖液的pH＝8.4，則37℃時的pH＝7.4，所以一定要在使用溫度下進行配制，室溫下配制的Tris-HCl緩沖液不能用于0℃～4℃。3、易吸收空氣中的CO2，所以配制的緩沖液要蓋嚴密封。

一旦確定了緩沖液的pH值，就需要選擇使用什么樣的緩沖體系。首先是在選擇緩沖體系時要確保選擇的緩沖體系在你設(shè)定的pH值上確實具有緩沖能力。選擇的緩沖體系，其解離常數(shù)pKa值應(yīng)該在設(shè)定的pH上下一個pH值單位內(nèi)。

     再者是確保你使用的緩沖液濃度足夠高以達到實際緩沖溶液的作用，正常一般選擇的濃度是20~100mM。需要記住的是你所使用的緩沖體系不應(yīng)該影響蛋白活性！例如，磷酸鹽會抑制激酶的活性，所以反應(yīng)前應(yīng)徹底地透析掉。

 此外，一些緩沖體系對溫度非常敏感，例如Tris-HCl緩沖液，如果你在25℃時將緩沖體系調(diào)至pH值8，pH值將在5℃時增加到8.58而在37℃時降到7.71。所以，如果打算在4℃條件下保存蛋白或在37℃進行實驗，就應(yīng)該考慮到室溫下調(diào)的pH值可能在實驗條件中就不適用了。  其他類型的色譜分離柱，如凝膠過濾柱和Ni2 親和層析柱，可能需要更高的鹽濃度。我一般用高達500 mM NaCl進行高鹽淋洗，以防止蛋白和柱之間的非特異性結(jié)合。