實驗動物的抓取和固定

在進行實驗時，為了不損傷動物的健康，不影響觀察指標(biāo)，并防止被動物咬傷，首先要限制動物的活動，使動物處于安靜狀態(tài)，工作人員必須掌握合理的抓取固定方法。抓取動物前，必須對各種動物的一般習(xí)性有所了解。操作時要小心仔細、大膽敏捷、熟練準(zhǔn)確、不能粗暴，不能恐嚇動物，同時，要愛惜動物，使動物少受痛苦。觀察大鼠注射尼古J期間和戒斷后體重變化,存活情況和古丁戒斷評分另外選取Control組NS組和NT9組各6只大鼠測定右下肢足底MWT和TWL。

實驗動物各種體液、的采集方法

消化液的采集

(一) 唾液

1. 直接抽取法 在急性實驗中， 可用吸管直接插入動物口腔或唾液腺導(dǎo)管抽吸唾液，此法非常簡單，但從口腔抽吸唾液會有雜質(zhì)混入。

2. 制造腮腺瘺法 在慢性實驗中,收集狗的唾液，要用手術(shù)方法將腮腺導(dǎo)管開口移向體外，即以腮腺導(dǎo)管為中心，切成一直徑約2～3cm的圓形粘膜片，將此粘膜片，與周圍組織分開，穿過皮膚切口引到頰外,將帶有導(dǎo)管開口的粘膜片與周圍的皮膚縫合,腮腺分泌的唾液就流出頰外。這種方法可以收集到較純凈的唾液。切除之shen組織稱重，以右shen重量減去所切除的左shenshen組織重量來間接估算殘余shen重量，并算出切除率。

(二)胃液

1. 直接收集胃液法 急性實驗時，先將動物，將插胃管經(jīng)口插入胃內(nèi),在灌胃管的出口連一，用此可收集到胃液,此法適用于狗等大型動物。如是大鼠,需手術(shù)剖腹，從幽門端向胃內(nèi)插入一塑料管，再由口腔經(jīng)食道將一塑料管插入前胃，用pH7.5、35℃左右的生理鹽水，以12ml/h的流速灌胃，收集流出液，進行分析。將幾種不同的應(yīng)激因子在實驗全程中應(yīng)用，順序隨機，使動物不能預(yù)料刺激的發(fā)生。

2. 制備胃瘺法 在慢性實驗中,收集胃液多用胃瘺法,如全胃瘺法、巴氏小胃瘺法、海氏小胃瘺法等。制備小胃是將動物的胃分離出一小部分，縫合起來形成小胃，主胃與小胃互不相通，主胃進行正常消化，從小胃可收集到純凈的胃液。應(yīng)用該法，可以待動物恢復(fù)健康后，在動物清醒狀態(tài)下反復(fù)采集胃液。在一些特殊的實驗中，如進行尾靜脈注射時，可使用特殊的固定裝置進行固定,如尾靜脈注射架或粗的玻璃試管。

(三)胰液和膽汁

在動物實驗中，主要是通過對胰總管和膽總管的插管而獲得胰液或膽汁。狗的胰總管開口于十二指腸降部，在緊靠腸壁處切開胰管，結(jié)扎固定并與導(dǎo)管相連，即可見無色的胰液流入導(dǎo)管。大鼠的胰管與膽管匯集于一個總管，在其入腸處插管固定，并在近肝門處結(jié)扎和另行插管，可分別收集到胰液和膽汁。百奧賽圖利用自主開發(fā)制備的B-h17A人源化小鼠（敲除小鼠IL-17A基因，同時敲進人IL-17A基因）為針對人IL-17A靶點的MSzhi療yao效研究提供了一個可靠的MOG誘導(dǎo)的EAE模型。

有時也可通過制備胰瘺和膽囊瘺來獲得胰液和膽汁。

大鼠癲xian模型

利用yao物制備癲xian模型(yao物建模)

注射yao物，通過破壞腦部神經(jīng)遞質(zhì)釋放的平衡，阻斷興奮性氨基酸的循環(huán)通路，誘發(fā)dian癇發(fā)生。

1注射合成紅藻氨酸制備大鼠dian癇模型紅藻氨酸(kainic acidKA)是海藻的提取物，可作用于脊椎動物zhong樞神經(jīng)系統(tǒng)的谷氨酸

受體，可直接興奮神經(jīng)元，又可增強鈉離子的通透性而使神經(jīng)細胞去極化，誘dian癰發(fā)生。KA的人工合成品即合成紅藻氨酸( synthetical kainic acid,SKA) 腹腔注射。發(fā)作階段性明顯，行為學(xué)表現(xiàn)規(guī)律、穩(wěn)定，si亡率低，適宜大規(guī)模建模。例如誘發(fā)動脈粥樣硬化時，草食類動物兔需要的膽固醇劑量比人高得多，而且病變部位并不出現(xiàn)在主動脈弓。

2.注射氯化鋰_.匹羅卡品致大鼠癲xian模型近年來一直被認(rèn)為是研究顳葉dian癇的理想模型。

3.穿刺注射海人酸杏仁核點燃大鼠癲xian模型

4.急性氯化鐵dian癇模型

5.青mei素點燃模型

6.戍四唑點燃模型

類似人類失神癲xian特征,

7.戊si氮(PIZ)誘導(dǎo)的急、慢性癲xian

8.杏仁核點刺激點燃模型電極植入， 給予連續(xù)電剌激。

9.經(jīng)眼電刺激大鼠癲xian模型