實驗動物各種體液、的采集方法

消化液的采集

(一) 唾液

1. 直接抽取法 在急性實驗中， 可用吸管直接插入動物口腔或唾液腺導管抽吸唾液，此法非常簡單，但從口腔抽吸唾液會有雜質(zhì)混入。

2. 制造腮腺瘺法 在慢性實驗中，收集狗的唾液，要用手術方法將腮腺導管開口移向體外，即以腮腺導管為中心，切成一直徑約2～3cm的圓形粘膜片，實驗外包哪家好，將此粘膜片，與周圍組織分開，穿過皮膚切口引到頰外，將帶有導管開口的粘膜片與周圍的皮膚縫合，腮腺分泌的唾液就流出頰外。這種方法可以收集到較純凈的唾液。

(二)胃液

1. 直接收集胃液法 急性實驗時，先將動物，將插胃管經(jīng)口插入胃內(nèi)，在灌胃管的出口連一，用此可收集到胃液，此法適用于狗等大型動物。如是大鼠，需手術剖腹，從幽門端向胃內(nèi)插入一塑料管，再由口腔經(jīng)食道將一塑料管插入前胃，用pH7.5、35℃左右的生理鹽水，以12ml/h的流速灌胃，實驗外包費用，收集流出液，進行分析。

2. 制備胃瘺法 在慢性實驗中，收集胃液多用胃瘺法，如全胃瘺法、巴氏小胃瘺法、海氏小胃瘺法等。制備小胃是將動物的胃分離出一小部分，實驗外包選哪家，縫合起來形成小胃，主胃與小胃互不相通，主胃進行正常消化，從小胃可收集到純凈的胃液。應用該法，可以待動物恢復健康后，在動物清醒狀態(tài)下反復采集胃液。

(三)胰液和膽汁

在動物實驗中，主要是通過對胰總管和膽總管的插管而獲得胰液或膽汁。狗的胰總管開口于十二指腸降部，在緊靠腸壁處切開胰管，結扎固定并與導管相連，即可見無色的胰液流入導管。大鼠的胰管與膽管匯集于一個總管，在其入腸處插管固定，并在近肝門處結扎和另行插管，可分別收集到胰液和膽汁。

有時也可通過制備胰瘺和膽囊瘺來獲得胰液和膽汁。

根據(jù)GB19489-2004實驗室 生物 安全通用要求，動物實驗室的 生物 安全要點:

動物實驗室的生物安全防護設施應參照BSL1-4實驗室的要求，還應考慮對動物呼吸、排泄、毛發(fā)、抓咬、掙扎、逃逸、動物實驗（如染毒、醫(yī)學檢查、取樣、解剖、檢驗等）、動物飼養(yǎng)、動物及排泄物的處置等過程產(chǎn)生的潛在生物危害的防護。應特別注意對動物源性氣溶膠的防護，例如對動物的剖檢應在負壓剖檢臺上進行。

應根據(jù)動物的種類、身體大小、生活習性、實驗目的等選擇具適當防護水平的、于動物的、符合國家相關標準的 生物安全柜 、動物飼養(yǎng)設施、動物實驗設施、消毒設施和清洗設施等。

實驗室建筑應確保實驗動物不能逃逸，非實驗室動物（如野鼠、昆蟲等）不能進入。實驗室設計（如空間、進出通道等）應符合所用動物的需要。

動物實驗室空氣不應循環(huán)。動物源氣溶膠應經(jīng)適當?shù)倪^濾/消毒后排出，成都實驗外包，不能進入室內(nèi)循環(huán)。

如動物需要飲用無菌水，供水系統(tǒng)應可安全消毒。

動物實驗室內(nèi)的溫度、濕度、照度、噪聲、潔凈度等飼養(yǎng)環(huán)境應符合國家相關標準的要求。

實驗動物的分組

(一)分組的原則：進行動物實驗時，經(jīng)常需要將選擇好的實驗動物按研究的需要分成若干組。動物分組應按隨機分配的原則，使每只動物都有同等機會被分配到各個實驗組與對照組中去，以避免各組之間的差別，影響實驗結果，特別是進行準確的統(tǒng)計檢驗，必須在隨機分組的基礎上進行。

每組動物數(shù)量應按實驗周期長短、實驗類型及統(tǒng)計學要求而定。如果是慢性實驗或需要定期處死動物進行檢驗的實驗，就要求選較多的動物，以補足動物自然和認為處死所喪失的數(shù)量，確保實驗結束時有合乎統(tǒng)計學要求的動物數(shù)量存在。

(二)建立對照組：分組時應建立對照組。1.自身對照組：是指實驗數(shù)據(jù)而言。實驗動物本身在實驗處理前、后兩個階段的各項相關數(shù)據(jù)就分別是對照組和實驗組的實驗結果，此法可排除生物間的個體差異。2.平行對照組：有正對照組和負對照組兩種。給實驗組動物某種處理，而給正對照組用同樣方法進行處理，但并不采用實驗所要求的或手段，負對照組則不給任何處理。3.具體分組時，應避免人為因素， 隨機把所有的動物進行編號，然后令其雙數(shù)為Ａ組(實驗組)，單數(shù)為B組(對照組)即可或反之。如果要分若干個組時，應該用隨機數(shù)字表示進行完全隨機分組。

實驗外包哪家好-英瀚斯生物科技公司-成都實驗外包由南京英瀚斯生物科技有限公司提供。實驗外包哪家好-英瀚斯生物科技公司-成都實驗外包是南京英瀚斯生物科技有限公司今年新升級推出的，以上圖片僅供參考，請您撥打本頁面或圖片上的聯(lián)系電話，索取聯(lián)系人：戴經(jīng)理。